RELATÓRIO DE PRÁTICA

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RELATÓRIO: ATIVIDADE CATALITICA DA AMILASE SALIVAR 
 
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as 
etapas e quais materiais utilizados. 
O processo de digestão inicia-se na boca com a mastigação, que quebra grandes 
partículas alimentares. As glândulas salivares, incluindo as parótidas, 
submaxilares e sublinguais, secretam proteínas serosas e mucosas, como a 
amílase salivar, essenciais na hidrólise do amido. A produção contínua de saliva, 
estimulada pelo sistema nervoso parassimpático, aumenta significativamente na 
presença de alimentos, atingindo até 40 vezes mais. Este líquido lubrifica e 
protege o tubo digestivo, permitindo o deslizamento fácil do alimento. A amílase 
salivar é sintetizada nas glândulas parótidas, contribuindo para a quebra do 
amido, presente principalmente em alimentos vegetais. A produção diária de 
saliva é aproximadamente 1,5 litros. 
- Materiais utilizados. 
Pera de borracha; 
Pisseta com agua destilada; 
6 tubos de ensaio; 
Pipeta de vidro de 5ml; 
Estante para os tubos de ensaio; 
Cronometro; 
Erlenmeyer; 
Proveta; 
Balao volumetrico de 100ml; 
Banho-maria; 
Banho de gelo; 
Bequer; 
Papel Toalha; 
Solucao de amido a 1%; 
Solucao de HCl 1:2. 
 
2. Responda as Perguntas: 
 
a)Qual a composição bioquímica do amido? 
 
O amido é um polissacarídeo composto por cadeias de amilose e/ou 
amilopectina. A amilose consiste em unidades de glicose unidas por ligações 
glicosídicas α-1,4, enquanto a amilopectina é formada por unidades de glicose 
com ligações glicosídicas α-1,4 e α-1,6. O amido é uma molécula complexa 
composta por várias moléculas de glicose. 
 
b)Qual o objetivo do uso de HCl, aquecimento e resfriamento no 
procedimento da hidrólise química do amido? 
 
No procedimento de hidrólise química do amido, o HCl (ácido clorídrico) é 
utilizado para proporcionar um ambiente ácido, desencadeando a quebra das 
ligações glicosídicas entre as unidades de glicose no amido. O aquecimento 
acelera a reação de hidrólise, aumentando a taxa de quebra das moléculas de 
amido. O resfriamento posterior é realizado para interromper a reação e 
estabilizar os produtos formados. 
 
Em resumo, o HCl cria um ambiente ácido para iniciar a hidrólise, o aquecimento 
acelera o processo, e o resfriamento posterior controla e interrompe a reação, 
permitindo a análise dos produtos resultantes da quebra do amido. 
 
 
c)Descreva a sequência de transformações operadas pela amilase na 
molécula da amilose. 
 
A amilase inicia a sequência de transformações na molécula da amilose através 
da hidrólise das ligações glicosídicas α-1,4, promovendo a quebra da amilose 
em unidades menores. Isso resulta na formação de oligossacarídeos, dextrinas, 
maltose e glicose. Durante essa reação, a estrutura helicoidal da amilose 
interage com o iodo, gerando uma coloração azul. 
 
As ligações glicosídicas α-1,4 são quebradas, levando à produção de maltose, 
glicose e amilopectina. A maltose é composta por duas unidades de glicose 
unidas por uma ligação glicosídica, enquanto a amilopectina é uma molécula 
mais complexa, contendo ramificações nas ligações glicosídicas α-1,6. 
 
Assim, a sequência de transformações operadas pela amilase resulta na quebra 
da amilose em produtos mais simples, como maltose e glicose, e na produção 
de amilopectina, enquanto a interação com o iodo evidencia a estrutura 
helicoidal da amilose. 
 
d) Explique os resultados obtidos durante o ensaio bioquímico. 
 
Os resultados obtidos durante o ensaio bioquímico, que envolve a reação do iodo 
com as moléculas de amido, indicam informações importantes sobre a estrutura 
e a presença de amido na amostra. O iodo é conhecido por reagir com amido de 
maneira característica. 
A coloração azul resultante da interação do iodo com as cadeias helicoidais da 
amilose é um indicativo positivo da presença de amido. A intensidade da cor 
pode ser relacionada à concentração de amido na amostra. Esse teste é usado 
rotineiramente para identificar a presença de amido em soluções, como parte de 
análises bioquímicas e laboratoriais. 
Assim, a observação da cor azul após a adição de iodo à amostra sugere a 
presença de amido, fornecendo informações valiosas sobre a composição 
bioquímica da substância em questão. 
 
 
 
TEMA DE AULA: REAÇÃO DE SELIWANOFF (REAÇÃO PARA DISTINÇÃO 
ENTRE 
ALDOSES E CETOSES) 
 
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as 
etapas e quais materiais utilizados. 
 
A prática segue os mesmos princípios teóricos da reação de Molisch, resultando 
na formação de furfural e hidroximetilfurfural (HMF). Ambos os produtos, 
isoladamente, são incolores. Para desenvolver coloração visível (vermelha), 
adiciona-se um composto fenólico ao meio. A reação de Seliwanoff se diferencia 
da de Molisch nos reagentes: ácido clorídrico (HCl) causa desidratação do 
carboidrato, e o fenol reage como o furfural e HMF, sendo substituído por 
resorcinol. Esse teste diferencia aldoses de cetoses, sendo a reação com 
cetoses mais rápida e intensa devido à formação mais fácil do furfurol em 
comparação com o hidroximetilfurfural. 
 
- Materiais utilizados: 
Solução 0,1M de frutose 
Solução 0,1M de glicose 
Agua destilada 
3 Tubos de ensaio 
Conta-gotas 
Pipeta de 5 ml 
Becker 
Banho-Maria 
Reagente de Seliwanoff 
 
2. Responda as Perguntas: 
a) Qual o princípio da técnica de Seliwanoff? 
 
O princípio da técnica de Seliwanoff é diferenciar aldoses de cetoses com base 
na velocidade e intensidade da reação. O ácido clorídrico (HCl) promove a 
desidratação do carboidrato, e o composto fenólico (resorcinol) reage, resultando 
em uma coloração visível (neste caso, vermelha). A reação é mais rápida e 
intensa com cetoses devido à formação facilitada de furfurol em comparação 
com o hidroximetilfurfural. 
 
b) Qual o objetivo de utiliza um tubo apenas com água destilada. 
Porque é necessário aplicar fervura e ácido clorídrico (HCl) durante o 
teste de Seliwanoff? 
 
A água destilada deve ser utilizada no laboratório para deixar as vidrarias 
completamente limpas, pois a água destilada e pura, então vai evitar que as 
análises sofram algum tipo de 
interferência. ela proporciona menos interrupções por conta de outras 
substâncias 
presentes na água, ou seja, foi usada como controle negativo. 
 
c) Explique os resultados obtidos durante o ensaio bioquímico quanto a 
presença de aldose e cetoses. 
 
Os resultados obtidos no ensaio bioquímico revelam a presença de aldoses e 
cetoses com base na coloração desenvolvida. Se a coloração é mais rápida e 
intensa, indica a presença de cetoses, uma vez que a formação do furfurol é 
facilitada. A diferenciação ocorre devido à desidratação do carboidrato causada 
pelo ácido clorídrico (HCl) durante o ensaio de Seliwanoff, destacando a 
natureza e a velocidade da reação. 
 
 
PRECIPITAÇÃO POR ÁCIDOS FORTES E METAIS PESADOS 
 
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as 
etapas e quais materiais utilizados. 
 
Este procedimento e realizado para verificar a influência de sais de metais 
pesados e de ácidos fortes sobre a solubilidade da proteína, bem como a 
influência do pH sobre a carga liquida da molécula polipeptídica. 
 
- Materiais utilizados: 
Acido tricloroacético a 20% 
Acetato de chumbo 10% 
Ovoalbumina 10% 
2 tubos de ensaio 
Pipeta 
Pera de borracha 
 
2. Responda as Perguntas: 
a)Por que a ovoalbunina precipita na presença de ácidos fortes e metais 
pesados? 
 
A ovoalbúmina precipita na presença de ácidos fortes e metais pesados devido 
à alteração das condições de carga e estrutura da proteína. A exposição a ácidos 
fortes e metais pesados pode levar à desnaturação da ovoalbúmina, resultando 
na formação de agregados insolúveis, conhecidos como precipitados. Essa 
mudança na estrutura proteica ocorre devido a interações disruptivas que afetam 
as forças de ligação eletrostática e as interações entre aminoácidos, 
levando à precipitação. 
 
b)Expliquepor que a ovoalbumina torna-se insolúvel após a precipitação. 
 
A ovoalbumina torna-se insolúvel após a precipitação devido à mudança em sua 
estrutura tridimensional. Quando exposta a condições desfavoráveis, como 
ácidos fortes ou metais pesados, as forças de ligação e interações entre 
aminoácidos na ovoalbumina são perturbadas, resultando na desnaturação da 
proteína. Esse processo leva à exposição de grupos hidrofóbicos normalmente 
ocultos na estrutura nativa da proteína. A exposição desses grupos hidrofóbicos 
favorece a formação de agregados insolúveis, conhecidos como precipitados, 
pois buscam evitar a interação com a água. Essa insolubilidade é uma 
característica marcante da precipitação proteica. 
 
C) Explique os resultados encontrados no experimento. 
 
 
Os resultados do experimento indicam que a ovoalbumina precipitou na 
presença de ácidos fortes e metais pesados, conforme esperado. A adição de 
ácido tricloroacético e acetato de chumbo provocou a desnaturação da 
ovoalbumina, levando à formação de precipitados insolúveis. A mudança nas 
condições de carga e estrutura da proteína resultou na exposição de grupos 
hidrofóbicos, favorecendo a agregação e a insolubilidade da ovoalbumina. 
A observação da precipitação após a exposição aos reagentes permite concluir 
que esses agentes influenciaram negativamente a solubilidade da proteína. Esse 
fenômeno é fundamental para entender a influência de sais de metais pesados 
e ácidos fortes sobre as propriedades da ovoalbumina, contribuindo para a 
compreensão da relação entre a estrutura proteica e o ambiente químico em que 
a proteína está inserida. 
 
 
PRECIPITAÇÃO FRACIONADA POR SOLUÇÕES SALINAS CONCENTRADAS 
 
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as 
etapas e quais materiais utilizados. 
 
 
Durante a aula, foi realizado o processo de precipitação de proteínas, 
considerando que a concentração de sal necessária para a precipitação varia 
para cada proteína. Os seguintes materiais foram utilizados: ovoalbumina a 
10%, solução de sulfato de amônia concentrada, água destilada, 2 tubos de 
ensaio, pipeta de vidro e pera de borracha. 
 
 - Materiais utilizados: 
Ovoalbumina a 10% 
Solução de sulfato de amônia concentrada 
Água destilada 
2 tubos 
Pipeta de vidro 
Pera de borracha 
 
 
- Responda as Perguntas: 
a) Explique os conceitos de “Salting out”, “Salting in” e camada de 
solvatação? 
 
“Salting out” refere-se à precipitação de proteínas pela adição de sais, onde a 
elevada concentração salina reduz a solubilidade das proteínas, promovendo a 
sua precipitação. "Salting in” é o oposto, onde a solubilidade das proteínas 
aumenta com a adição de sais. A *camada de solvatação* envolve a interação 
entre as moléculas de água e as proteínas, sendo perturbada pela presença de 
sais. 
 
b) Qual o princípio bioquímico do experimento? 
 
O princípio bioquímico do experimento está relacionado com a capacidade de 
diferentes proteínas de precipitarem em concentrações específicas de sal. A 
variação na solubilidade das proteínas em resposta à concentração de sal 
permite a sua separação com base nessa propriedade. 
 
c) Explique os resultados encontrados durante o experimento. 
 
Os resultados do experimento indicarão as concentrações de sal específicas em 
que ocorre a precipitação da ovoalbumina. Isso proporciona informações sobre 
a solubilidade da proteína em diferentes condições salinas, sendo crucial para 
entender e otimizar processos de separação de proteínas em contextos 
bioquímicos e laboratoriais. 
 
 
 
REAÇÃO DE BENEDICT (IDENTIFICAÇÃO DE AÇÚCARES REDUTORES) 
 
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as 
etapas e quais materiais utilizados. 
 
Durante a aula, foram realizados testes utilizando o Reagente de Benedict para 
detectar a presença de açúcares redutores. Os procedimentos foram os 
seguintes: 
 
1. Utilização de pipetas de vidro para medir volumes precisos das soluções de 
sacarose e glicose. 
2. Combinação das soluções com o Reagente de Benedict em tubos de ensaio. 
3. Colocação dos tubos em uma estante para tubos de ensaio. 
4. Aquecimento dos tubos em banho-maria. 
5. Observação das mudanças de cor, indicativas da presença de açúcares 
redutores. 
 
- Materiais utilizados. 
Pipetas de vidro 5ml 
Pipeta de vidro 5mL 
Tubo de ensaio Estante para tubos de ensaio 
Pêra de borracha 
Papel toalha 
Descarte para pipetas 
Frasco com água destilada 
Reagente de Benedict 
Solução de sacarose 1% 
Solução de glicose 1% 
Banho-maria 
 
 
2. Responda as Perguntas: 
 
 
a) Explique o princípio da técnica bioquímica do experimento. 
 
O Reagente de Benedict reage com açúcares redutores, como glicose e frutose, 
formando um composto insolúvel de cor avermelhada. Esse princípio é utilizado 
para identificar a presença desses açúcares por meio da mudança de cor 
observada durante o aquecimento. 
 
b) Qual o conceito de “açúcares redutores”? 
 
Açúcares redutores são carboidratos capazes de doar elétrons em reações 
químicas, reduzindo outras substâncias. Nesse experimento, glicose e frutose 
são exemplos de açúcares redutores. 
 
c) Explique os resultados encontrados no experimento. 
 
A mudança de cor nos tubos de ensaio indica a presença de açúcares redutores. 
Glicose e frutose resultam em uma coloração avermelhada, enquanto a sacarose 
não reage positivamente. 
 
d) Explique como o experimento pode ser aplicado nas atividades na área 
clínica. 
 
Este experimento pode ser aplicado clinicamente para detectar glicose na urina, 
sendo útil no diagnóstico ou monitoramento de condições como diabetes. A 
mudança de cor nos testes pode indicar a presença de açúcares redutores na 
amostra clínica, fornecendo informações importantes sobre o estado 
metabólico do paciente. 
 
REAÇÃO DE BIURETO 
 
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as 
etapas e quais materiais utilizados. 
Durante a aula prática assistida, foi explicado que as proteínas são biomoléculas 
importantes em nossa constituição corporal, desempenhando diversas funções. 
Após os procedimentos conduzidos pela professora, ela esclareceu que na aula 
prática em questão seria utilizado o reagente de biureto. Este composto reage 
com grupos carbonilas presentes nas proteínas, especificamente o CH, 
resultando em uma coloração violeta. Após a explicação de conceitos, a 
professora Rosilma Oliveira realizou os seguintes procedimentos no 
experimento: coleta de amostras biológicas contendo proteínas, como ovo, 
carne, leite e feijão; preparação das soluções reagentes, incluindo o Reagente 
de Biureto; adição das soluções reagentes às amostras biológicas; e observação 
das mudanças de coloração nas amostras. Além disso, os materiais utilizados 
para esse experimento foram: equipamentos como pipetas, pêra de borracha, 
tubos de ensaio e estantes para tubos. As soluções incluíram ovoalbumina a 
10%, reagente de Biureto e água destilada. No procedimento experimental, um 
tubo de ensaio com 1 ml de água destilada serviu como controle, enquanto em 
outro tubo foi adicionado 1 ml de ovoalbumina a 10% e biureto (a quantidade 
exata não foi especificada, mas acredita-se que tenha sido 1 ml de cada). O 
resultado observado na análise experimental foi que no tubo A (ovoalbumina), o 
teste foi positivo, apresentando uma coloração violeta e confirmando a presença 
de proteína. No tubo de controle experimental B (água destilada), o resultado foi 
negativo, conforme o esperado. 
 
2. Responda as Perguntas: 
 
a) Explique o princípio bioquímico da Reação de Biureto. 
 
A Reação de Biureto é baseada na capacidade do reagente de biureto em reagir 
com grupos carbonilas presentes nas proteínas. O composto de biureto forma 
complexos coloridos com esses grupos, resultando em uma coloração violeta, 
indicativa da presença de proteínas. 
 
b) Qual o tipo de ligação que ocorre entre o Biureto e as moléculas 
identificadas? 
 
A ligação formadaentre o Biureto e as moléculas de proteínas é uma ligação de 
coordenação. Nesse tipo de interação, os íons de cobre no reagente de biureto 
interagem com os grupos carbonilas das proteínas, contribuindo para a formação 
do complexo colorido. 
 
c) Explique os resultados encontrados no experimento. 
 
No tubo A, contendo ovoalbumina e biureto, a coloração violeta observada 
indicou uma reação positiva, confirmando a presença de proteína. Já no tubo de 
controle experimental B, contendo água destilada e biureto, o resultado negativo 
estava de acordo com o esperado, mostrando que a coloração violeta não 
ocorreu na ausência de proteínas. Esses resultados validam a especificidade da 
Reação de Biureto para a detecção de proteínas. 
 
 
REAÇÃO DO LUGOL (IDENTIFICAÇÃO DE POLISSACARÍDEOS) 
 
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as 
etapas e quais materiais utilizados. 
 
Na aula prática, foi abordado que os polissacarídeos são macromoléculas 
compostas por sacarídeos, uma classe de carboidratos que inclui 
monossacarídeos, dissacarídeos e polissacarídeos, como o amido. O amido é 
comum na alimentação e é encontrado em diversos alimentos vegetais. Durante 
a aula, a professora utilizou o reagente de Lugol para identificar a presença de 
polissacarídeos. Foram preparadas diferentes amostras em tubos de ensaio, 
incluindo amido, glicogênio e celulose, dissolvidas em água destilada. O 
reagente de Lugol foi adicionado a cada amostra, observando-se as mudanças 
de cor como indicativo da presença de polissacarídeos. 
 
Os materiais utilizados foram: 
- 2 Pipetas de vidro de 1ml 
- 2 Tubos de ensaio 
- Solução de Lugol 2% 
- Solução de amido 1% 
- Pêra de borracha 
- Pipeta Pasteur 
- Água destilada. 
 
2. Responda as Perguntas: 
 
a) Explique o princípio bioquímico da utilização do lugol na identificação 
de polissacarídeos. 
 
O lugol, uma solução de iodeto de potássio e iodeto de iodo, reage com os 
polissacarídeos, especialmente o amido, formando um complexo estável que 
resulta em uma mudança de cor. A coloração azul ou esverdeada indica a 
presença de amido. 
 
b) Explique para quais situações essa técnica pode ser utilizada. 
 
Essa técnica pode ser utilizada em diversos contextos, como análises 
laboratoriais de alimentos para verificar a presença de amido, identificação de 
substâncias em biologia celular, e em pesquisas científicas relacionadas à 
presença de polissacarídeos em diferentes materiais. 
 
c) Explique os resultados encontrados no experimento. 
 
No experimento, a presença de amido foi confirmada pela alteração de cor para 
azul ou esverdeada. A ausência de alteração de cor em outra amostra indica a 
possível ausência de amido naquela substância específica. Esses resultados 
demonstram a especificidade da reação de Lugol para a identificação de 
polissacarídeos, principalmente o amido. 
 
 
 
REAÇÃO DE SAPONIFICAÇÃO 
 
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as 
etapas e quais materiais utilizados. 
 
A saponificação é uma reação que forma um sal orgânico (sabão) e álcool a 
partir de um éster de base inorgânica em uma solução aquosa. A professora 
iniciou o experimento com os seguintes procedimentos: 
 
1. Preparação da solução de hidróxido de sódio (NaOH). 
2. Preparação da solução de triglicerídeos. 
3. Aquecimento das soluções em banho-maria. 
4. Adição de ácido clorídrico (HCl). 
5. Separação das fases. 
 
Os resultados obtidos foram a formação de uma mistura homogênea de glicerol 
e sabão, que se separa em duas fases após a acidificação. A camada superior 
consiste no óleo livre, enquanto a camada inferior contém glicerol e sabão. O 
sabão, solúvel em água, possui a propriedade de solubilizar gorduras e sujeiras, 
sendo eficaz na limpeza de superfícies. O glicerol, subproduto da reação, pode 
ser usado em diversas aplicações industriais. 
 
Materiais utilizados: 
- 4 Pipetas de vidro de 5ml 
- 2 Pipetas de vidro de 1ml 
- 3 Tubos de ensaio 
- Solução de hidróxido de potássio 10% 
- Solução de Cloreto de Cálcio 
- Óleo de soja 
- Pêra de borracha 
- Banho-maria 
 
2. Responda as Perguntas: 
 
a) Explique bioquimicamente o que são ácidos graxos e triglicerídeos. 
 
Os ácidos graxos são cadeias de carbono com um grupo carboxila. Os 
triglicerídeos são ésteres formados pela ligação de três ácidos graxos a uma 
molécula de glicerol. Os ácidos graxos são componentes essenciais dos 
triglicerídeos e desempenham papéis cruciais no armazenamento e liberação de 
energia. 
b) Explique a fundamentação teórica da técnica de saponificação. 
A técnica de saponificação baseia-se na reação química entre um éster, como um 
triglicerídeo, e uma base forte, como o hidróxido de sódio. Isso resulta na 
formação de sabão e glicerol. 
 
c) Explique os resultados encontrados no experimento. 
 
Os resultados indicam a eficácia da saponificação na produção de sabão. A 
separação das fases demonstra a formação de uma camada superior de óleo, 
enquanto a camada inferior contém glicerol e sabão. Isso confirma a 
capacidade do sabão de solubilizar o óleo, sendo um processo relevante na 
produção de agentes de limpeza. 
 
 
 
 
SOLUBILIDADE DOS LIPÍDIOS 
 
 
 
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as 
etapas e quais materiais utilizados. 
 
Na prática realizada hoje, exploramos a solubilidade de lipídios. Inicialmente, foi 
destacada a importância dos lipídios, que incluem ácidos graxos, triglicerídeos e 
fosfolipídios, desempenhando diversas funções essenciais no corpo. 
Caracterizados por sua hidrofobicidade, os lipídios são insolúveis em água, o 
que pode ser observado pela separação entre óleo e água. Os procedimentos 
conduzidos durante a aula foram os seguintes: 
 
1. Preparação das soluções. 
2. Adição de água destilada. 
3. Adição da substância lipídica. 
4. Observação dos resultados. 
5. Análise visual. 
 
Os resultados indicaram a insolubilidade dos lipídios em soluções aquosas. Ao 
adicionar água destilada à solução de lipídios, observou-se a formação de uma 
camada de lipídios na superfície da água, evidenciando que os lipídios não se 
misturam com a água. Essa observação está alinhada com a estrutura 
bioquímica dos lipídios, que apresentam pouca ou nenhuma polaridade, 
tornando-os insolúveis em soluções aquosas. 
 
*Materiais Utilizados:* 
- 5 Pipetas de vidro de 5ml 
- 5 Tubos de ensaio 
- Óleo de cozinha 
- Ácido Clorídrico 
- Hidróxido de Sódio 0,1N 
- Álcool etílico 
- Éter etílico 
- Pêra de borracha 
- Água destilada 
 
2. Responda as Perguntas: 
 
a) Explique a estrutura bioquímica dos lipídios correlacionado com sua 
característica de insolubilidade em soluções aquosas. 
 
A estrutura bioquímica dos lipídios, caracterizada por cadeias hidrofóbicas de 
ácidos graxos, torna-os insolúveis em soluções aquosas. A ausência de grupos 
polares em grande parte dos lipídios dificulta sua interação com a água, 
resultando na formação de camadas distintas. 
 
b) Explique a fundamentação teórica da técnica de solubilidade dos 
lipídios. 
 
A técnica baseia-se na propriedade hidrofóbica dos lipídios. Ao adicionarmos 
água destilada a uma solução de lipídios, a falta de afinidade entre lipídios e 
água leva à formação de camadas separadas, indicando a insolubilidade dos 
lipídios em ambientes aquosos. 
 
c) Explique os resultados encontrados no experimento. 
 
Os resultados demonstraram a segregação dos lipídios ao adicionar água 
destilada, confirmando a característica de insolubilidade em soluções aquosas 
devido à natureza hidrofóbica dos lipídios. 
 
 
REFERENCIAS: 
https://www.infopedia.pt/apoio/artigos/$amilase-salivar 
https://mundoeducacao.uol.com.br/biologia/amido.htm 
https://www.teses.usp.br/teses/disponiveis/11/11141/tde-09092009- 
150507/publico/Luis_Polesi.pdf 
https://www.infoescola.com/bioquimica/amido/#:~:text=Com%20a%20mastiga%C3% 
A7%C3%A3o%20h%C3%A1%20libera%C3%A7%C3%A3o,em%20dtrina%2C%20m 
istura%20de%20polissacar%C3%ADdeoshttp://www.fcav.unesp.br/Home/departamentos/tecnologia/luciamariacararetoalves/a 
ula-4-enzimas---mecanismo-de-acao.pdf 
http://plone.ufpb.br/ldb/contents/paginas/teste-de-seliwanoff 
https://www.ecycle.com.br/agua-destilada/ https://www.stoodi.com.br/blog/quimica/hcl-
o-que-e/#:~:text=apresentando %20tonalidade%20amarela.-
,Fun%C3%A7%C3%A3o%20do%20HCL,um 
%20processo%20do%20sistema%20digestivo 
http://plone.ufpb.br/ldb/contents/paginas/teste-de-seliwanoff