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Esquema da análise de Salmonella pelo método ISO 6579 (2007) Método ISO 6579 (2007) (Método da International Organization for Standardization) Pré enriquecimento BPW (água peptonada tamponada) a 37±1ºC/ 18±2h. Enriquecimento seletivo RVS (caldo Rappaport-Vassiliandis Soja) a 41,5±1ºC/24±3h MKTTn (caldo tetrationado Muller-Kauffmann Novobiocina) a 37±1ºC/24±3h Plaqueamento diferencial XLD (Ágar Xilose Lisina Desoxicolato) a 37±1ºC/24±3h 2 opcional. Selecionar um meio adequado para o isolamento de cepas lactose positivas e dos sorotipos Typhi e Paratyphi. O Ágar Verde Brilhante (BG) e o Ágar Bismuto Sulfito (BS) podem ser utilizados 25g/25mL de amostra + 225mL de BPW Homogeneização Pré-enriquecimento Incubação 37ºC±1ºC/18±2h 1mL 0,1mL MKTTn 10mL RVS 10mL 37±1ºC/24±3h 41,5±1ºC/24±3h XLD meio opcional meio opcional XLD 37±1ºC/24±3h incubação * incubação* 37±1ºC/24±3h Colônias tipicas *Seguir orientaçoes do fabricante Purificação em Ágar Nutriente (NA) (estria de esgotamento) 37±1ºC/24±3h 1 colônia isolada Ágar Nutriente(NA) 37±1ºC/24±3h API 20E ou Série Bioquímica Teste de crescimento em TSI Ágar Triplice Açúcar Ferro (TSI) 37±1ºC/24±3h Teste de Voges-Proskauer (-) Caldo VM-VP 37±1ºC/24±3h Teste Urease(-) Ágar Uréia de Christensen 37±1ºC/24±3h Teste de Lisina Descarboxilase(+) Caldo Descarboxilase Lisina 37±1ºC/24±3h Teste de Indol (-) Caldo Triptona 1% 37±1ºC/24±3h Teste de β-galactosidade Usualmente (-) 0,25mL de sol. Salina 0,85% de esteril+ 1 gota de Tolueno 37±1ºC/5min em banho 0,25mL de reagente ONPG 37±1ºC/24±3h Sorologia Teste Sorológico Somático Detecção do antígeno Vi Teste Sorológico Flagelar Solução Salina 0,85% + cultura Anti-soro Poli + cultura Solução Salina 0,85% + cultura Anti-soro Vi + cultura Agar Nutriente semi-sólido (0,4% de agar) não inclinado 37±1ºC/24±3h Solução Salina + cultura Anti-soro Poli H + cultura Teste de urease: inocular cada cultura em um tube de Agar Ureia de Christensen inclinado (estrias na rampa). Incubar a 37±1ºC/24±3h e observar a ocorrência de viragem alcalina do indicador, com alteração da cor meio pêssego para cor de rosa escuro (teste positivo), ou permanecia da cor original (teste negativo). Teste de lisina descarboxilase: inocular cada cultura em um tubo de Caldo Descarboxilase 0,5% L-Lisina, logo abaixo da superfície do liquido. Incubar a 37±1ºC/24±3h e observar se ocorre turvação com a viragem alcalina do indicador, alterando a cor do meio para roxo azulado (teste positivo) ou viragem acida para amarelo (teste negativo). Teste de Voges-Proskauer: inocular cada cultura em um tubo de 3mL de caldo VM-VP e incubar a 37±1ºC/24±3h. Após a incubação, adicionar ao tubo duas gotas de solução aquosa 0,5% de creatina monohidrato, três gotas de solução α-naftol 5% e duas de solução KOH 40%, nesta sequência e agitando o tubo entre um reagente e outro. Cor rosa escuro ou vermelha no meio de cultura, no intervalo de 15 min, indica teste positivo. O não desenvolvimento indica teste negativo. Teste de Indol: inocular cada cultura em um tubo com 5 ml de Caldo Triptona 1% suplementado com 1g/1 de DL-Triptofano e incubar a 37±1ºC/24±3h. Após a incubação adicionar, para cada 5 ml de cultura, 1 ml do reagente Kovacs para teste de indol e observar se há desenvolvimento de um anel vermelho-violeta na superfície do meio de cultura (teste positivo), ou se o anel permanece amarelado, cor do reagente de Kovacs (teste negativo). Desenvolvimento de vários tons entre vermelho e rosa indica teste indeterminado. Teste β-galactosidase: suspender uma alçada de cada cultura em um tubo com 0,25mL de solução salina 0,85% estéril. Adicionar ao tubo uma gota de tolueno, agitar bem e incubar em banho a 37±1ºC/5min, adicionar ao tubo 0,25mL do reagente ONPG de β-galactosidase, agitar bem e incubar em banho a 37±1ºC/24±3h, examinando periodicamente. O desenvolvimento de uma cor amarela no liquido, geralmente no intervalo de 20 min, é indicativo de teste positivo. A maioria das cepas de Salmonella entérica subsp. entérica são negativas.