apostila FARMACOGNOSIA APLICADA aulas Praticas

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INSTITUTO DE CIÊNCIAS DA SAÚDE 
 
 
 
 
CURSO DE FARMÁCIA 
 
 
 
ROTEIRO PARA AULAS PRÁTICAS 
 
 
 
 
DISCIPLINA: 
FARMAGNOSIA APLICADA 
 
Instituto de Ciências da Saúde 
CURSO: FARMÁCIA 
DISCIPLINA: FARMACOGNOSIA APLICADA 
TITULO DA AULA: IDENTIFICAÇÃO QUÍMICA DE 
GLICOSÍDEOS FLAVONOÍDICOS 
AULA 
1 
 
 
 
OBJETIVO: Identificar a presença de glicosídeos flavonoídicos em drogas de 
origem vegetal 
 
 PROCEDIMENTO: 
Droga vegetal: (camomila ou faveiro ou arnica) 
1- Pesar cerca de 2 g da droga em pó ou rasurada; 
2- Colocar em um béquer e juntar 30 mL de etanol a 70%; 
3- Aquecer até ebulição; 
4- Esfriar a solução; 
5- Filtrar por algodão para outro béquer; deixando o resíduo no béquer 
6- Repetir a extração com mais 20 mL de álcool 70%; 
7- Filtrar, juntando os filtrados 
8- Dividir o filtrado em 4 tubos (1 para o branco) e proceder às seguintes 
identificações: 
 
A- Reação de Shinoda: 
A 3 mL da solução hidroalcoólica obtida, adicionar 1 a 2 fragmentos de 
magnésio metálico e 1 mL de ácido clorídrico concentrado pelas paredes do 
tubo (CUIDADO adicione o ácido na CAPELA e mantenha o tubo na estante): a 
reação ocorre lentamente com o desenvolvimento de cor que varia do róseo ao 
avermelhado; 
 
B- Reação com cloreto férrico: 
Juntar a 3 mL da solução hidroalcoólica obtida, 2 gotas de solução de cloreto 
férrico a 2%; verifica-se o aparecimento de cor que varia do verde amarelado, 
castanho, violeta, cinza, de acordo com o tipo de composto flavonoídico; 
 
C- Reação com hidróxido de sódio: 
 
A 3 mL da solução hidroalcoólica obtida, adicionar 2 gotas de solução de 
hidróxido de sódio a 5%; verifica-se o aparecimento de cor amarela que varia 
de intensidade; 
 
D- Reação com cloreto de alumínio 5%: 
Pingar duas gotas da solução hidroalcoólica obtida separadamente em um 
papel de filtro, sobre uma das gotas pingar uma gota de cloreto de alumínio 
5%, esperar secar e verificar fluorescência sob luz UV. 
 
MATERIAIS QUANTIDADE 
 Droga vegetal: camomila ou arnica 200g * 
 Espátula 1 
 Béquer 250 2 
 Béquer 100 2 
 Proveta 50 ou 100 mL 1 
 Funil de vidro 2 
 Pêra de borracha 1 
 Papel de filtro (médio) 4 
 Algodão porção 
 Bastão de vidro 2 
 Suporte universal 1 
 Argolas 2 
 Pipeta 5 ou 10mL 4 
 Tubo de ensaio 8 
 Suporte para tubo 1 
 
 Cloreto férrico 2 ou 5% 100mL* 
 Álcool 70% 2L* 
Cloreto de alumínio 100mL* 
Ácido clorídrico concentrado 100mL* 
Hidróxido de sódio 10% 100mL* 
 Magnésio metálico Lascas 30* 
 
EQUIPAMENTOS QUANTIDADE 
 Manta de aquecimento 1 
 Balança técnica 2 * 
Luz Ultra Violeta (266 nm e 366nm) 1 
 
 
Descarte do material utilizado conforme Normas Internacionais de Segurança: 
Cloreto férrico diluído, hidróxido de sódio e ácido clorídrico 
diluído 
200mL 
 
 
Instituto de Ciências da Saúde 
CURSO: FARMÁCIA 
DISCIPLINA: FARMACOGNOSIA APLICADA 
TITULO DA AULA: IDENTIFICAÇÃO QUÍMICA DE 
ANTRAQUINONAS 
AULA 
2 
 
 
 
OBJETIVO: Identificar a presença de compostos antraquinônicos em drogas de 
origem vegetal 
 
PROCEDIMENTO: Droga vegetal: (Cáscara sagrada ou frângula ou sene) 
 Antraquinonas livres 
1- Agitar 1 g da droga pulverizada com 3 mL de éter ou outro solvente 
orgânico volátil; 
2- Decantar o solvente para um tubo de ensaio; 
3- Repetir o procedimento e juntar o solvente no mesmo tubo; 
4- NÃO DESPREZAR A DROGA - ela será utilizada para as próximas 
reações; 
5- Adicionar ao extrato orgânico cerca de 1 mL de hidróxido de amônia a 10%; 
6- Agitar. 
A coloração rósea ou vermelha na fase aquosa indica a presença de 
antraquinonas livres. 
Ligação C-O 
1- Adicionar 20 mL de água destilada à droga extraída previamente; 
2- Ferver por 2 minutos; 
3- Acrescentar 5,0 mL de HCl a 10% e ferver por mais 1 minuto; 
4- Esfriar e filtrar para um funil de separação; 
5- Adicionar 5 mL de hexano ou outro solvente orgânico; 
6- Agitar; 
7- Deixar em repouso até as camadas separarem; 
8- Decantar a camada orgânica para um tudo de ensaio; 
9- NÃO DESPREZAR A CAMADA AQUOSA ÁCIDA 
10- Adicionar 3 mL de hidróxido de amônia a 10% à fase orgânica (tubo) e 
agitar; 
11- Deixar repousar. 
 
Coloração vermelha na camada amoniacal: reação positiva, indicando a 
presença de glicosídeos antraquinônicos com ligação C-O. 
 
Ligação C-C 
1- Passar a fase aquosa ácida que ficou no funil para um béquer e 
acrescentar 2 mL de cloreto férrico 5 %; 
2- Ferver por 3 minutos; esfriar; 
3- Filtrar para funil de separação; 
4- Adicionar 5 mL de hexano ou outro solvente orgânico; 
5- Agitar; 
6- Decantar a camada orgânica para um tubo de ensaio; 
7- Adicionar 3 mL de amônia diluída no tubo e agitar; 
8- Deixar repousar. 
Coloração vermelha na camada amoniacal: reação positiva, indicando a 
presença de glicosídeos antraquinônicos com ligação C-C. 
 
 
MATERIAIS QUANTIDADE 
 Droga vegetal: cáscara sagrada 200g * 
 Espátula 1 
 Béquer 250 2 
 Béquer 100 2 
 Proveta 50 ou 100 mL 1 
 Funil de vidro 2 
 Pêra de borracha 1 
 Papel de filtro (médio) 4 
 Algodão porção 
 Bastão de vidro 2 
 Suporte universal 1 
 Argolas 2 
 Pipeta 5 ou 10mL 4 
 Tubo de ensaio 8 
 Suporte para tubo 1 
Funil de separação 2 
 
 Cloreto férrico 2 ou 5% 100mL* 
Hexano, diclorometano ou outro solvente orgânico volátil 500mL* 
Ácido clorídrico 10% 500mL* 
Hidróxido de sódio ou de amônio10% 100mL* 
Água destilada 1000mL 
 
EQUIPAMENTOS QUANTIDADE 
 Manta de aquecimento 1 
 Balança técnica 2 * 
 
 
Descarte do material utilizado conforme Normas Internacionais de Segurança: 
Solvente orgânico 500 mL 
Cloreto férrico diluído 500mL. 
 
Observações:* = por classe, os outros por grupo, todos os reativos devem estar 
com pipetas de 2 mL __________ 
 
Instituto de Ciências da Saúde 
CURSO: FARMÁCIA 
DISCIPLINA: FARMACOGNOSIA APLICADA 
TITULO DA AULA: ÍNDICE DE ESPUMA DE 
GLICOSÍDEOS SAPONÍNICOS (SAPONÓSIDOS) 
AULA 
3 
 
 
 
OBJETIVO: 
Avaliação semi-quantitativa de glicosídeos saponínicos em drogas de origem 
vegetal 
 
PROCEDIMENTO: 
Droga vegetal: (quilaia ou alcaçuz ou saboeira ou salsaparrilha) 
1- Pesar exatamente 0,50 g da droga pulverizada e colocar num béquer; 
2- Adicionar 40 mL de água destilada e levar à fervura por 5 minutos; 
3- Esfriar, decantar o extrato aquoso e filtrar por algodão para um balão 
volumétrico de 50 mL; 
4- Manter o pó (resíduo) no béquer; 
5- Repetir a extração com 15 mL de água destilada só até o início da fervura, 
esfriar e filtrar os extratos aquosos para o balão volumétrico até completar o 
volume (até o menisco); 
6- Numerar 8 tubos de ensaio de 1 a 8; 
7- Colocar 5,0 mL de água destilada em todos, exceto no primeiro tubo de 
ensaio; 
8- Colocar 5,0 mL de extrato saponínico no primeiro tubo; 
9- Colocar 5,0 mL de extrato saponínico no segundo tubo e homogeneizar o 
conteúdo delicadamente; 
10- Transferir 5,0 mL de solução do segundo tubo para o terceiro e 
homogeneizar delicadamente; 
11- Continuar o processo em sequência, até o oitavo tubo, utilizando a mesma 
pipeta; 
12- Desprezar 5,0 mL do último tubo para que todos fiquem com o mesmo 
volume; 
13- Agitar vigorosamente todos os tubos no sentido longitudinal, ao mesmo 
tempo, por 15 segundos; 
14- Deixar o conjunto em repouso por 15 minutos; 
15- Observar qual dos tubos apresenta uma camada de espuma de 1 cm de 
espessura; 
16- Calcular a concentração de droga nesse tubo; 
17- Calcular o índice de espuma; 
 
Tubo nº 1 2 3 4 5 6 7 8 
Vol 5 ml 5 5 ml do 5 ml do 5 ml do 5 ml do 5 ml do 5 ml do 
 
extrato ml tubo 2 tubo 3 tubo 4 tubo 5 tubo 6 tubo 7 
Vol. Água 
(mL) 
0 5 5 5 5 5 5 5 
Obs.: desprezar 5 ml do tubo 8 para uniformizar os volumes 
 
MATERIAIS QUANTIDADE 
 Droga vegetal: quilaia 200g * 
 Espátula 1 
 Béquer 250 2 
 Béquer 100 2 
 Proveta 50 ou 100 mL 1 
 Funil de vidro 2 
Balão volumétrico 50 mL 2 
 Papel de filtro (médio) 4 
 Algodão porção 
 Bastão de vidro 2 
 Suporte universal 1 
 Argolas
1 
 Pipeta 5 ou 10mL 4 
 Tubo de ensaio iguais (pelo menos 6 e 6 iguais) 12 
 Suporte para tubo 1 
Pêra de borracha 1 
 Água destilada 2L* 
 
 
 
 
EQUIPAMENTOS QUANTIDADE 
 Manta de aquecimento 1 
 Balança técnica 2 * 
 
Descarte do material utilizado conforme Normas Internacionais de Segurança: 
 
 
Observações:* = por classe, os outros por grupo, todos os reativos devem estar 
com pipetas de 2 mL __________ 
 
Instituto de Ciências da Saúde 
CURSO: FARMÁCIA 
DISCIPLINA: FARMACOGNOSIA APLICADA 
TITULO DA AULA: IDENTIFICAÇÃO QUÍMICA DE 
GLICOSÍDEOS CARDIOATIVOS 
AULA 
4 
 
 
OBJETIVO: Identificar a presença de glicosídeos cardioativos em drogas de 
origem vegetal 
 
PROCEDIMENTO: 
Droga vegetal: (espirradeira ou dedaleira) 
1- Pesar cerca de 1 g da droga; 
2- Adicionar 20 mL de etanol a 70% e ferver; 
3- Filtrar por algodão para um béquer; 
4- Adicionar 3 ml de solução saturada de acetato de chumbo; 
5- Filtrar por papel de filtro para funil de separação 
6- Adicionar 5 mL de água destilada; 
7- Extrair a solução hidroalcoólica com 2 porções de 4 mL cada, de 
clorofórmio; 
8- Reunir os extratos clorofórmios obtidos e dividir em 4 tubos de ensaio; 
9- Colocar os tubos em banho-maria (num bequer) e evaporar tudo; 
10- Fazer as seguintes reações de identificação: 
 
A - Reação de Liebermann-Bouchard (identifica o núcleo esteroidal) 
Redissolver o resíduo com 0,5 mL de anidrido acético; transferir 
cuidadosamente pelas paredes, para um tubo de ensaio contendo 
aproximadamente 1 mL de ácido sulfúrico concentrado; NÃO AGITAR. 
Observar o aparecimento de um anel castanho-avermelhado na zona de 
contato. 
 
 
 
B - Reação de Kedde (identifica a lactona insaturada) 
Juntar ao resíduo 4 a 5 gotas de solução alcoólica a 1% de ácido 3,5- 
dinitrobenzóico e 2 gotas de solução de KOH 1 N. Observar o aparecimento de 
coloração vermelho violáceo intensa em caso de reação positiva; 
Ou 
C-Reação de Baljet (identifica a lactona insaturada) 
Juntar ao resíduo 4 a 5 gotas de solução alcoólica a 2% de ácido pícrico e 2 
gotas de solução de KOH 1 N. Observar o aparecimento de coloração 
alaranjada intensa em caso de reação positiva. 
 
D - Reação de Keller-Killiani (identificação de 2-desoxiaçúcares) 
Dissolver o resíduo em cerca de 1 mL de ácido acético glacial; juntar à 
solução 2 gotas de cloreto férrico a 2%; transferir cuidadosamente através das 
paredes, para outro tubo de ensaio contendo cerca de 1 mL de ácido sulfúrico 
concentrado. NÃO AGITAR. Observar o aparecimento de coloração vermelho-
acastanhada na zona de contato dos líquidos e de coloração amarelo-
esverdeada na camada acética. 
 
MATERIAIS QUANTIDADE 
 Droga vegetal: espirradeira 200g * 
 Espátula 1 
 Béquer 250 2 
 Béquer 100 2 
 Proveta 50 ou 100 mL 1 
 Funil de vidro 2 
 Funil de separação 2 
 Papel de filtro (médio) 4 
 Algodão porção 
 Bastão de vidro 2 
 Suporte universal 1 
 Argolas 2 
 Pipeta 5 ou 10mL 4 
 Tubo de ensaio 8 
 Suporte para tubo 1 
Pêra de borracha 1 
 Acetato básico de chumbo 10% 400mL* 
 Álcool 70 ou 80% 2L* 
 Clorofórmio 500mL* 
 Ac. Pícrico etanólico 2% 100mL* 
 KOH 10% 100mL* 
 Anidrido acético 100mL* 
 ác. Sulfúrico conc 200ml* 
 Ác. Acético glacial 100mL* 
 Cloreto férrico 2 ou 5% 100mL* 
ácido 3,5- dinitrobenzóico 50mL* 
 
EQUIPAMENTOS QUANTIDADE 
 Banho Maria grande ou chapa de aquecimento grande 1 ou 2* 
 Balança técnica 2 * 
 Manta de aquecimento 1* 
 
 
 
Descarte do material utilizado conforme Normas Internacionais de Segurança: 
Ácido sulfúrico , anidrido acético, ácido acético, ácido 3,5- 
dinitrobenzóico e ácido pícrico 
500mL 
 
Observações:* = por classe, os outros por grupo, todos os reativos devem estar 
com pipetas de 2 mL __________ 
 
Instituto de Ciências da Saúde 
CURSO: FARMÁCIA 
DISCIPLINA: FARMACOGNOSIA APLICADA 
TITULO DA AULA: IDENTIFICAÇÃO QUÍMICA DE 
ALCALÓIDES 
AULA 
5 
 
 
 
OBJETIVO: Identificar a presença de alcalóides em drogas de origem vegetal 
 
 
PROCEDIMENTO: 
Droga vegetal: (Jaborandi ou boldo ou quina) 
1- Colocar 1 g da droga pulverizada em um béquer; 
 
2- Adicionar 30 mL de solução de HCl a 1%; 
 
3- Aquecer a mistura brandamente por 3 minutos; 
 
4- Esfriar e filtrar por algodão para um funil de separação; 
 
5- Alcalinizar o filtrado com solução de hidróxido de amônio a 10% (verificar 
com papel de tornassol), utilizando como indicador o papel de tornassol; 
 
6- Extrair o filtrado alcalinizado com 2 porções de 3 mL cada, de clorofórmio; 
 
7- Filtrar os extratos orgânicos por algodão para um Becker (se necessário – 
caso emulsionar); 
 
8- Evaporar o clorofórmio em banho-maria; 
 
9- Redissolver o resíduo resultante em 0,5 mL de HCl diluído; 
 
10- Pegar 4 lâminas de microscopia limpas e em cada uma delas colocar uma 
gota da solução ácida obtida; 
 
11- Ao lado da gota da solução ácida colocar uma gota de um dos reativos 
(Mayer, Bertrand, Dragendorff e Bouchardat); 
 
 
12- Unir as duas gotas com um bastão de vidro; 
 
13- Observar e anotar os resultados. 
 
MATERIAIS QUANTIDADE 
 Droga vegetal: jaborandi 200g * 
 Espátula 1 
 Béquer 250 2 
 Béquer 100 2 
 Proveta 50 ou 100 mL 1 
 Funil de vidro 2 
 Funil de separação 2 
 Papel de filtro (médio) 4 
 Algodão porção 
 Bastão de vidro 2 
 Suporte universal 1 
 Argolas 1 
 Pipeta 5 ou 10mL 4 
Papel de tornassol vermelho porção 
Lâminas de vidro (tipo microscopia) 8 
Grau e pistilo de vidro 1 
Ácido clorídrico 10% 1L* 
NH4OH 20% 1L* 
 Clorofórmio 500mL* 
Reativos de: Dragendorff, Bouchardat, Bertrand, Mayer 50 mL* 
Álcool 96 300mL. 
 
EQUIPAMENTOS QUANTIDADE 
 Manta de aquecimento 1 
 Banho Maria grande ou chapa de aquecimento grande 1 ou 2* 
 Balança técnica 2 * 
 
 
Descarte do material utilizado conforme Normas Internacionais de Segurança: 
 
 
Observações:* = por classe, os outros por grupo, todos os reativos devem estar 
com pipetas de 2 mL __________